全身性基因敲除 Knockout-KO（Cas9-KO）

运用CRISPR/Cas9技术，在选定的目的基因拟敲除区域两侧设计sgRNA，引导Cas9进行切割，形成双链断口（DSB），然后通过非同源末端连接（NHEJ）的方式进行修复，造成目的基因大片段缺失，从而实现基因敲除。

优势：大片段敲除，敲除更彻底；最快35天内可获得Founder小鼠(F0)。

条件性基因敲除 Conditional Knockout(Cas9-CKO)

运用CRISPR/Cas9技术和自主研发的高效率同源重组基因编辑RGE技术（Robust Genome Editing system），把两个LoxP位点分别引入到拟敲除的外显子两侧。再与组织特异性表达 Cre 酶的工具鼠进行配繁，即可获得具有组织或细胞特异性敲除目的基因的小鼠。还可以与控制Cre表达的其他诱导系统相结合，对某一基因同时实现时空两方面的调控（Cre/ERT系统）。

常规/定点转基因 Transgene

将构建好的转基因片段通过显微注射的方法注射到受精卵的原核内，注射的DNA片段随机整合到小鼠受精卵的基因组中，并稳定遗传给后代。再通过繁育建系获得稳定表达的转基因小鼠，称为常规转基因小鼠。

随着研究不断深入及技术的升级改进，目前已发现了如Rosa26，H11等“基因敲入安全港位点”，敲入这些位点的基因表达活性高，对旁侧基因影响较小，且是单拷贝、单位点定点整合，可实现外源基因的稳定高表达，即定点转基因。

基因敲入 Knock In（Cas9-KI）

运用CRISPR/Cas9技术和自主研发的高效率同源重组基因编辑RGE技术（Robust Genome Editing system），能把目的基因或者点突变等引入到小鼠基因组中的指定位置，可实现与内源基因的共表达或者原位替换。结合Cre/LoxP系统，还可实现目的基因的时空特异性敲入。